GMS150ระบบควบคุมก๊าซที่มีความแม่นยำสูงสามารถผสมก๊าซที่แตกต่างกันได้ถึง 4 ชนิด อัตราการไหลของก๊าซอินพุตแต่ละวงจรวัดได้อย่างแม่นยำโดยใช้เครื่องวัดการไหลของมวลความร้อนและควบคุมอย่างแม่นยำโดยตัวควบคุมการไหลของมวลในตัวซึ่งส่งออกเป็นก๊าซที่เป็นเนื้อเดียวกันผสมกันอย่างสมบูรณ์ อินพุตและเอาต์พุตก๊าซใช้ข้อต่อที่รวดเร็วและปลอดภัยของ Prestolok ซึ่งรับประกันความสะดวกสบายและความปลอดภัยระหว่างการใช้งาน

GMS150ระบบควบคุมก๊าซที่มีความแม่นยำสูงสามารถใช้ในการควบคุมความเข้มข้นของก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์ไนโตรเจนคาร์บอนมอนอกไซด์มีเทนก๊าซแอมโมเนียและก๊าซอื่น ๆ

GMS150ระบบควบคุมก๊าซที่มีความแม่นยำสูงแบ่งออกเป็นรุ่น GMS150 และรุ่น GMS150 MICRO ซึ่งรุ่น GMS150 มีความแม่นยำสูงกว่าและรุ่น GMS150 MICRO สามารถปรับอัตราการไหลได้มากขึ้น

ฟิลด์แอ็พพลิเคชัน:

Ÿ ใช้ร่วมกับตู้บ่มเพาะพืชเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพที่เลี้ยงด้วยแสง ฯลฯ สำหรับการเพาะเลี้ยงการควบคุมก๊าซที่แม่นยำ

Ÿ จำลอง CO ที่แตกต่างกัน₂สภาพแวดล้อมที่เข้มข้นเพื่อศึกษาผลกระทบของภาวะเรือนกระจกต่อพืช / สาหร่าย

Ÿ งานวิจัย CO₂ความสัมพันธ์ระหว่างความเข้มข้นและการสังเคราะห์แสง

Ÿ จำลองผลกระทบของก๊าซที่เป็นอันตรายเช่นก๊าซไอเสียต่อพืช / สาหร่าย

Ÿ การศึกษาการบำบัดและการใช้ประโยชน์จากก๊าซที่เป็นอันตรายจากพืช/สาหร่าย

พารามิเตอร์ทางเทคนิค:

Ÿ หลักการวัด: วิธีการวัดการไหลของมวลความร้อน

Ÿ ก๊าซที่สามารถปรับได้: อากาศไนโตรเจนคาร์บอนไดออกไซด์ออกซิเจนคาร์บอนมอนอกไซด์มีเทนก๊าซแอมโมเนียและอื่น ๆ แห้งบริสุทธิ์ไม่กัดกร่อนไม่มีก๊าซระเบิดแหล่งก๊าซต้องเตรียมโดยผู้ใช้เอง

Ÿ ช่องควบคุม: มาตรฐาน 2 ช่องและช่อง 1 คือ Air-N₂,ช่อง 2 คือ CO₂,สามารถขยายได้ถึง 4 ช่อง

Ÿ อุณหภูมิในการทำงาน: 15-50 ℃

Ÿ ขั้วต่อ I / O: Parker Prestolok Joint (6 มม.)

Ÿ ความดันอินพุต: 3-5bar

Ÿ ซีล: ยางฟลูออไรด์

Ÿ จอแสดงผล: หน้าจอ LCD ขนาด 8 × 21 ตัวอักษร

Ÿ ขนาด: 37 ซม. × 28 × 15 ซม

Ÿ แหล่งจ่ายไฟ: 115-230V AC

Ÿ เครื่องมือที่สามารถใช้ร่วมกันได้: FMT150 การเพาะเลี้ยงสาหร่ายและระบบตรวจสอบออนไลน์, MC1000 8 ช่องการเพาะเลี้ยงสาหร่ายและระบบตรวจสอบออนไลน์, FytoScope ชุดอัจฉริยะแหล่งกำเนิดแสง LED เติบโตกล่อง, ตู้บ่มเพาะหรือเครื่องปฏิกรณ์ที่ออกแบบโดยผู้ใช้เอง (สามารถจัดหารูปแบบการเชื่อมต่อเส้นทางอากาศ) ฯลฯ

GMS150พารามิเตอร์การปรับรุ่น:

Ÿ ช่วงการไหลขั้นต่ำ: 0.02-1 มิลลิลิตร / นาที

Ÿ ช่วงการไหลสูงสุด: 20-1000 มิลลิลิตร / นาที

Ÿ ช่วงการไหลที่ปรับแต่งได้: สามารถปรับแต่งระหว่างการไหลสูงสุดและการไหลต่ำสุด การกำหนดค่ามาตรฐาน ช่อง 1 (Air-N₂): 20-1000 ml/min； ช่อง 2 ( CO₂): 0.4-20 ml/min； CO ปรับได้₂ความเข้มข้น 0.04% - 100% (ความเข้มข้นในการควบคุมที่แท้จริงเกี่ยวข้องกับการไหล)

Ÿ ความแม่นยำ: ± 0.5%, บวกช่วงเต็ม± 0.1% (3-5ml / นาทีสำหรับช่วงเต็ม± 1%, <3ml / นาทีสำหรับช่วงเต็ม± 2%)

Ÿ ความเสถียร: <ช่วงเต็ม± 0.1% (อ้างอิง 1ml / min N₂）

Ÿ เวลามีเสถียรภาพ: 1 ~ 2 วินาที

Ÿ เวลาอุ่นเครื่อง การอุ่นเครื่อง 30 นาทีเพื่อความแม่นยำสูงสุด 2 นาทีความเบี่ยงเบนของอุ่นเครื่อง± 2%

Ÿ ความไวของอุณหภูมิ: <0.05% / ℃

Ÿ ความไวต่อแรงดัน: 0.1% / บาร์ (อ้างอิง N₂）

Ÿ ความไวของทัศนคติ: 90 °ที่ระดับความดัน 1bar ข้อผิดพลาดสูงสุด 0.2% (Ref N₂）

Ÿ น้ำหนัก: 7kg

GMS150-MICROพารามิเตอร์การปรับรุ่น:

Ÿ ช่วงการไหลขั้นต่ำ: 0.2-10 มล. / นาที

Ÿ ช่วงการไหลสูงสุด: 100-5000 มล. / นาที

Ÿ ช่วงการไหลที่ปรับแต่งได้: สามารถปรับแต่งระหว่างการไหลสูงสุดและการไหลต่ำสุด การกำหนดค่ามาตรฐาน ช่อง 1 (Air-N₂): 40-2000 ml/min； ช่อง 2 ( CO₂): 0.8-40 ml/min； CO ปรับได้₂ความเข้มข้น 0.04% - 100% (ความเข้มข้นในการควบคุมที่แท้จริงเกี่ยวข้องกับการไหล)

Ÿ ความแม่นยำ: ± 1.5% บวกช่วงเต็ม± 0.5%

Ÿ การทำซ้ำ: การไหล <20 มิลลิลิตร / นาทีสำหรับช่วงเต็ม± 0.5%, การไหล> 20 มิลลิลิตร / นาทีสำหรับอัตราการไหลจริง± 0.5%

Ÿ เวลามีเสถียรภาพ: 1 วินาที

Ÿ เวลาอุ่นเครื่อง การอุ่นเครื่อง 30 นาทีเพื่อความแม่นยำสูงสุด 2 นาทีความเบี่ยงเบนของอุ่นเครื่อง± 2%

Ÿ ความไวของอุณหภูมิ: จุดศูนย์ <0.01% / ℃, ความเต็ม <0.02% / ℃

Ÿ ความไวของทัศนคติ: 90 °ที่ระดับความดัน 1bar ข้อผิดพลาดสูงสุด 0.5 มล. / นาที (Ref N₂）

Ÿ น้ำหนัก: 5 กก

กรณีการใช้งาน:

ไซยาโนแบคทีเรียวิจัยร่วมกับการเพาะเลี้ยงสาหร่าย FMT150 และระบบตรวจสอบออนไลน์Cyanotheceจังหวะการเผาผลาญ Superday ของ ATCC 51142 (Cervený, 2013, PNAS)

สถานที่กำเนิด:ยุโรป

อ้างอิง:

1. Sarayloo E,et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile ofChlorella vulgarisby two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769

2. Mitchell M C,et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism inChlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902

3. Hulatt C J,et al. 2017.Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347

4. Jouhet J,et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423

5. Angermayr S A,et al. 2016. CulturingSynechocystissp. Strain PCC 6803 with N₂and CO₂in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189

6. Acuña A M,et al. 2016.A method to decompose spectral changes inSynechocystisPCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249